УСТАНОВЛЕНИЕ ВИДОВОГО СОСТАВА ПОЛЕЗНОЙ ЭНТОМОФАУНЫ В САДАХ ЮГО-ВОСТОКА КАЗАХСТАНА И В ГОРНЫХ ЛЕСАХ НА ЯБЛОНЕ СИВЕРСА
DOI:
https://doi.org/10.37884/03-1-2025/19Ключевые слова:
яблонная плодожорка, энтомофаг, яблоня Сиверса, популяция, паразит, хищник, маструсАннотация
В статье приведены местные популяции энтомофагов (паразитов, хищников) яблонной плодожорки (CydiapomonellaL) и других чешуекрылых вредителей в садах юго-востока Казахстана и в горных дикоплодовых лесах на дикой яблоне Сиверса. Выявлен специализированный энтомофаг маструс (Mastrus ridens(Horstmann, 2009)), который является перспективным паразитом для разведения и применения против яблонной плодожорки в садах. Также были проведены работы по лабораторному разведению яблонной плодожорки и энтомофага Mastrus ridens.Разведение паразита в лабораторных условиях осуществляли на гусеницах яблонной плодожорки 5-го возраста, при температуре 240С и влажности – 60%.
Для решения вопроса включения энтомофага Mastrus ridens в систему биологической защиты сада от яблонной плодожорки, в лабораторных условиях была проведена оценка влияния ряда биологических и химических инсектицидов на совместимость с эктопаразитом.
Учитывая значительные трудности с лабораторным размножением Mastrus ridens, нами были дополнительно проведены исследования паразита –бракона (Braсon hebetor Say.), поддерживаемого в коллекции института. Было установлено, что бракон эффективно парализует личинок яблонной плодожорки, демонстрируя степень паразитирования до 68,7%.
Библиографические ссылки
Закон РК «О производстве органической продукции в РК» от 31.03.2021 г. (https://adilet.zan.kz/rus/docs/Z2400000089).
Т. Ю. Бараненко, Л. М. Медведева. ЯБЛОННАЯ ПЛОДОЖОРКА, МЕРЫ БОРЬБЫ С НЕЙ // Научный журнал АПК России. – Челябинск. – 2018. – Т.25. – №2. – С.199-203 (https://rusapk.sursau.ru/upload/iblock/943/rusapk_25_2.pdf#page=9).
Балахнина И.В. и др. Биоразнобразие, как обязательное условие биогенетической регуляции яблонного сада. Биологическая защита растений-основа стабилизации агроэкосистем. – Краснодар. – 2018. – С.76-79 (https://www.researchgate.net/profile/Dina-Elisovetcaia/publication/384052753_SEEDS_OF_EUROPEAN_BEECH_Fagus_sylvatica_COLLECTED_FROM_THE_NATURAL_RESERVE_PLAIUL_FAGULUI_STUDY_OF_REPRODUCTIVE_CAPACITY/links/66e6e41ea438c86fdccfa791/SEEDS-OF-EUROPEAN-BEECH-Fagus-sylvatica-COLLECTED-FROM-THE-NATURAL-RESERVE-PLAIUL-FAGULUI-STUDY-OF-REPRODUCTIVE-CAPACITY.pdf).
Яковук, В. А. Экологическая защита сада / В. А. Яковук // Биологическая защита растений - основа стабилизации агроэкосистем : материалы Международной научно-практической конференции, Краснодар, 11–13 сентября 2018 года. Том Выпуск 10. – Краснодар: ИП Дедкова С.А. (типография «Гранат»), 2018. – С. 481-483. (https://elibrary.ru/item.asp?id=35597045)
В. А. Яковук, М. В. Пушня, Е. Ю. Родионова, И. В. Балахнина, А. Ю. Собина, А. С. Абдрахманова, А. А. Пачкин. Анализ многолетнего мониторинга лёта яблонной плодожорки как основа планирования защитных мероприятий. Земледелие. - № 7. – 2020. – С. 39-43 (doi:10.24411/0044-3913-2020-10708) file:///C:/Users/kaznii010/Downloads/analiz-mnogoletnego-monitoringa-lyota-yablonnoy-plodozhorki-kak-osnova-planirovaniya-zaschitnyh-meropriyatiy%20(1).pdf .
Милевская, И. А. Феромонный мониторинг сада яблони и особенности применения биологически активных веществ при защите от яблонной плодожорки [Использование регуляторов роста насекомых в условиях Ставропольского края] / И. А. Милевская // Экологическая безопасность в АПК. Реферативный журнал. – 2009. – № 2. – С. 506. (https://elibrary.ru/item.asp?id=12232471)
Макаров Е.М. Паразиты яблонной плодожорки в горных садах Алматинской области и пути их использования // Биол.методы защиты с.-х. культур в Казахстане. (Сб. науч.тр. КазНИИ защиты и карантина растений). – Алма-Ата. – 1983. – С. 117-126. (https://zool.kz/wp-content/uploads/2020/05/ter13_4.pdf)
Charles J.G., Dugdale J.S. Non-target species selection for host-range testing of Mastrus ridens. - New Zealand.: Entomologist, 2011. – Vol.34. – P.45-51. (https://www.agriculture.gov.au/sites/default/files/sitecollectiondocuments/ba/plant/2013/bca-ra-for-the-release-mastrus-ridens/Draft-RA-for-the-release-Mastrus-ridens.pdf)
Jermy T. & Nagy B.Genetic control studies of Carpocapsa pomonella (Linnaeus) in Hungary, pp. 65–73. In Proceedings, Panel: Application of Induced Sterility for Control of Lepidopterous Populations. Joint FAO/IAEA Division of Atomic Energy in Food and Agriculture, 1–5 June 1970, Vienna, Austria. STI/PUB/281. IAEA, Vienna, Austria. (https://openknowledge.fao.org/server/api/core/bitstreams/6bfa5d57-9d56-4c6d-bf4e-7fa38c6c2d31/content/i1537e03.pdf)
Bloem, S., Bloem, K.A. & Fielding, L.S. Mass-rearing and storing codling moth larvae in diapause: a novel approach to increase production for sterile insect release. J. Entomol. Soc. British Columb. – 1997. – Р.75–81. (https://journal.entsocbc.ca/index.php/journal/article/view/467)
F. E. Brinton, M. D. Proverbs, B. E. Carty. Artificial diet for mass production of the codling moth, Carpocapsa pomonella (Lepidoptera: Olethreutidae) // Canadian Entomologist , Volume 101, Issue 6, June 1969 , pp. 577 – 584. (https://doi.org/10.4039/Ent101577-6)
Dyck, V.A. Rearing codling moth for the sterile insect technique. Rome, Italy: Food and Agriculture Organization of the Unaited Nations Communication Division Vial delle Terme di Caracalla. – 2010. – 195 с. ` https://openknowledge.fao.org/server/api/core/bitstreams/6bfa5d57-9d56-4c6d-bf4e-7fa38c6c2d31/content/i1537e00.pdf~
Sauer, A. J., Fritsch, E., Undorf‑Spahn, K., Iwata, K., Kleespies, R. G., Nakai, M., & Jehle, J. A. (2021). Cross‑Resistance of the Codling Moth against Different Isolates of Cydia pomonella Granulovirus Is Caused by Two Different but Genetically Linked Resistance Mechanisms. Viruses, 13(10), 1952. https://doi.org/10.3390/v13101952
В. Н. Чайка. Проблемы массовых размножений насекомых. 1. Механизмы динамики популяций насекомых-фитофагов в концепциях эволюции генетического материала. Известия Харьковского энтомологического общества. - 2002, том IX, выпуск 1–2. – С. 250-262. (https://repo.btu.kharkiv.ua/server/api/core/bitstreams/c45bfa92-a705-418c-8225-91f5643226a0/content)
Агасьева И.С., Исмаилов В.Я., Федоренко Е.В., Нефедова М.В. Результаты апробации энтомоакарифагов в системах биологической защиты органических садов // Информационный бюллетень ВПРС МОББ. - 2017. – № 52. – С. 24-278. (file:///C:/Users/kaznii010/Downloads/52.pdf)
Нормативы биологической эффективности биоагентов (энтомофагов), стандарты и методики определения их качества. – Алматы. – 2012. – 39 с. (https://www.niizkr.kz/otdel-biozashity/)
Давлетшина А.Г., Боголюбова А.С. Рекомендации по массовому размножению габробракона (Habrobracon hebetorSay) в лабораторных условиях для практического использования его против хлопковой совки в Узбекистане. - Информационное сообщение. – 2018. – № 57. – С. 108-115. (https://www.researchgate.net/publication/342492713_MINISTERSTVO_VYSSEGO_I_SREDNEGO_SPECIALNOGO_OBRAZOVANIA_RESPUBLIKI_UZBEKISTAN_TASKENTSKIJ_GOSUDARSTVENNYJ_AGRARNYJ_UNIVERSITET_METODICESKOE_POSOBIE_dla_vypolnenia_laboratornyh_zanatij_po_kursu_Integri)
Темрешев И.И., Копжасаров Б.К., Бекназарова З.Б., Исина Ж.М. Калдыбеккызы Г., Кошмагамбетова М.Ж. Яблонная стеклянница Synanthedon myopaeformis (borkhausen, 1789) (lepidoptera, sesiidae) в Алматинской области Казахстана. Ізденістер, нәтижелер – Исследования, результаты». – 2023. – №4. (100) – С.80-98 (https://doi.org/10.37884/4-2023/11).
Lettmann J, Mody K, Kursch-Metz T, Blüthgen N, Wehner K. 2021. Bracon wasps for ecological pest control–a laboratory experimen. PeerJ 9:e11540. https://doi.org/10.7717/peerj.11540.
S.-H.Yu, M.I.Ryoo, J.H.Na, W.I. Choi. Effect of host density on egg dispersion and the sex ratio of progeny of Bracon hebetor (Hymenoptera: Braconidae) // Journal of Stored Products Research. – Volume 39. – Issue 4. – 2003. – Р.385-393. https://doi.org/10.1016/S0022-474X(02)00032-2.
Опубликован
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2025 Izdenister natigeler

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.
 
						 
							















