ИММУНОГЕННАЯ СВОЙСТВА ИНАКТИВИРОВАННОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ПАСТЕРЕЛЛЕЗА ПТИЦ ИЗ ШТАММА А 46 №576
DOI:
https://doi.org/10.37884/4-2024/01Ключевые слова:
иммуногенность, вакцина, пастерелла, изолят, штамм, цыплята, мыши.Аннотация
В статье приведены результаты иммуногенных свойств инактивированной вакцины против пастереллеза птиц из штамма А 46 № 576.
В результате изучения вакцины, приготовленной из полевых изолятов пастерелл Ч-1, К-1 и депонированного штамма А 46 №576 после добавления 6%-ного геля гидрата окиси алюминия через 12 месяцев исследования коэффициент иммунологической эффективности соответственно составил: 58%, 69% и 99%.
Протективные свойства инактивированных вакцин с адъювантом также оставались на уровне 12 месяцев (срок наблюдения). При этом наиболее высокие показатели отмечены у инактивированной вакцины из штамма А 46 № 576.
Библиографические ссылки
Карпун И.М., Бабина М.П. Формирование иммунного статуса цыплят-бройлеров /Ветеринарная медицина, 1996. - 6.- С.28-30.
Апатенко В.М. Иммунодефициты у животных // Ветеринария, 1992. - 5.- С.29.
Митушников В.М. Зависимость стресс-иммунитета от естественной резистентности птиц //Ветеринария, 1992. - 5.- С.30.
Mitushnikov V.M. Dependence of stress immunity on natural bird resistance //Veterinary Medicine, 2015. - 5.- S.30.
Guthrie C.A., Fulton R.W., Confer A.W. Antibiotic administration and vaccination with modified live Pasteurella haemolytica and multocida vaccine in calves // Proc. Annu. Conf. Am. Assoc. Bovine. Pract. Conf. 2016. - 32 nd. - P. 256.
Hamilton T.D., Roe J.M., Webster A.J. Synergistic role of gaseous ammonia in etiology of Pasteurella multocida induced atrophic rhinitis in swine // J. Clin. Microbiol. - 2017. - V.34. - № 9. - P.2185 - 2190.
Hopkins B.A., Olson L.D. Comparison of live avirulent PM 1 and CU fowl cholera vaccines by turkeys // Avian - Dis. - 2017. - V.41 (2). - P.317 - 325.
Kasten R.W., Hansen L.M., Hinojoza J., Bieber D., Ruehl W.W. Hirsh D.C. Pasteurella multocida produces a protein with homology to the P6 outer membrane protein of Haemophilus influenza // Infect. Immun. 2016. - V.63. - № 3. - P.989 - 993.
Kasten R.W., Wakenell P.S., Ahmad S., Yilma T.D., Hirsh D.C. Lack of protection against avian cholera by vaccination with recombinant P6 like protein from Pasteurella multocida // Avian - Dis. - 2016. V.41 (4). - P.972 - 976.
Isaacson R.E., Trigo E. Pili of Pasteurella multocida of porcine origin // FEMS microbiol. 2017. - V. 132. - № 3. - P.247 - 251.
Hilleman M.R. Vaccines in historic evolution and perspective: a narrative of vaccine discoveries // Vaccine. 2000. V. 18. № 15. P. 1436–1447.
O’Hagan D.T. Recent developments in vaccine delivery systems // New Generation Vaccines, 2nd / Ed. by M.M. Levine, J.B. Kaper, R. Rappuoli, M. Liu, M.F. Good. – New York: Marcel Dekker, 2004. P. 259–270.
McCartney S., Vermi W., Gilfillan S., Cella M. , Murphy T.L., Schreiber R.D., Murphy K.M., Colonna M. Distinct and complementary functions of MDA5 and TLR3 in poly (I: C)-mediated activation of mouse NK cells // J. Exp. Med. 2009. V. 206. № 13. P. 2967–2976.
McKee A.S., Munks M.W., Marrack P. How do adjuvants work? Important considerations for new generation adjuvants // Immunity. 2007. V. 27. № 5. P. 687–690.
O’Hagan D.T., De Gregorio E.. The path to a successful vaccine adjuvant–’The long and winding road’ // Drug Discovery Today. 2009. V. 14. P. 541–551.
Исаенко Е.Ю., Бабич Е.М., Елисеева И.В., Ждамарова Л.А., Белозерский В.И., Колпак С.А. Адъюванты в современной вакцинологии // Annals of Mechnikov Institute. 2013. № 4. C. 5–21.
Авдеева Ж.И., Алпатова Н.А., Бондарев В.П., Волкова Р.А., Лонская Н.И., Лебединская Е.В., Медуницын Н.В., Миронов А.Н., Озерецковский Н.А., Солдатов А.А., Шевцов В.А. Вакцины с адъювантами. Доклинические исследования // Биопрепараты. 2015. № 1(53). С. 15–20.
Edelman R. Vaccine adjuvants // Rev. Infect. Dis. 1980. V. 2. P. 370–383.
Beran J. Safety and immunogenicity of a new hepatitis B vaccine for the protection of patients with renal insufficiency including pre-haemodialysis and haemodialysis patients // Expert Opinion on Biological Therapy. 2008. V. 8. № 2. P. 235–247.
Banzhoff A., Gasparini R., Laghi-Pasini F., Staniscia T., Durando P., Montomoli E., Capecchi P., di Giovanni P., Sticchi L., Gentile C., Hilbert A., Brauer V., Tilman S., Podda A. MF59-adjuvanted H5N1 vaccine induces immunologic memory and heterotypic antibody responses in non-elderly and elderly adults // PLoS ONE. 2009. V. 4. № 2. Р. e4384.
Boyle J., J. Eastman J., Millar C., Camuglia S., Cox J., Pearse M., Good J., Drane D. The utility of ISCOMATRIX adjuvant for dose reduction of antigen for vaccines requiring antibody responses // Vaccine. 2007. V. 25. № 14. P. 2541–2544.
Schwarz T.F., Horacek T., Knuf M., Damman H.G., Roman F., Drame M., Gillard P., Jilg W. Single dose vaccination with AS03-adjuvanted H5N1 vaccines in a randomized trial induces strong and broad immune responsiveness to booster vaccination in adults // Vaccine. 2009. V. 27. № 45. P. 6284–6290.
Galli G., Medini D., Borgogni E., Zedda L., Bardelli M., Malzone C., Nuti S., Tavarini S., Sammicheli C., Hilbert A.K., Brauer V., Banzhoff A., Rappuoli R., Del Giudice G., Castellino F. Adjuvanted H5N1 vaccine induces early CD4+ T cell response that predicts long-term persistence of protective antibody levels // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2009. V. 106. P. 3877–3882.
Leroux-Roels I., Roman F., Forgus S., Maes C., De Boever F., Drame M., Gillard P., van der Most R., Van Mechelen M., Hanon E., Leroux-Roels G. Priming with AS03 A-adjuvanted H5N1 influenza vaccine improves the kinetics, magnitude and durability of the immune response after a heterologous booster vaccination: An open non-randomised extension of a doubleblind randomised primary study // Vaccine. 2010. V. 28. № 3. P. 849–857.
Vandepapeliere P., Horsmans Y., Moris P., Van Mechelen M., Janssens M., Koutsoukos M. , Van Belle P., Clement F., Hanon E., Wettendorff M., Garcon N., Leroux-Roels G. Vaccine adjuvant systems containing monophosphoryl lipid A and QS21 induce strong and persistent humoral and T cell responses against hepatitis B surface antigen in healthy adult volunteers // Vaccine. 2008. V. 26. № 10. P. 1375–1386.
Galli G., Hancock K., Hoschler K., DeVos J., Praus M., Bardelli M., Malzone C., Castellino F., Gentile C., McNally T., Del Giudice G., Banzhoff A., Brauer V., Montomoli E., Zambon M., Katz J., Nicholson K., Stephenson I. Fast rise of broadly crossreactive antibodies after boosting longlived human memory B cells primed by an MF59 adjuvanted prepandemic vaccine // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2009. V. 106. P. 7962–7967.
Huleatt J.W., Jacobs A.R., Tang J., Desai P., Kopp E.B., Huang Y., Song L., Nakaar V., Powell T.J. Vaccination with recombinant fusion proteins incorporating Toll-like receptor ligands induces rapid cellular and humoral immunity // Vaccine. 2007. V. 25. № 4. P. 763–775.
Khurana S., Chearwae W., Castellino F., Manischewitz J., King L.R., Honorkiewicz A., Rock M.T., Edwards K.M., Del Giudice G., Rappuoli R. , Golding H. Vaccines with MF59 adjuvant expand the antibody repertoire to target protective sites of pandemic avian H5N1 influenza virus // Science Translational Medicine. 2010. V. 2. № 15. pp. 15-45.
Malherbe L., Mark L., Fazilleau N., Mc Heyzer-Williams L.J. , Mc Heyzer Williams M.G. Vaccine adjuvants alter TCRbased selection thresholds // Immunity. 2008. V. 28. P. 698–709.
Allison A.C., Gregoriadis G. Liposomes as immunological adjuvants // Nature. 1974. V. 252. No. 5480. Article 252.
Eldrige J.H., Staas J.K., Meulbroek J.A., Tice T.R., Gilley R.M. Biodegradable microspheres as a vaccine delivery system // Mol. Immunol. 1991. V. 28. P. 287–290.
Eldrige J.H., Staas J.K., Meulbroek J.A., Tice T.R., Gilley R.M. Biodegradable and biocompatible poly (dl-lactide-coglycolide) microspheres as an adjuvant for Staphylococcal enterotoxin B toxoid which enhances the level of toxinneutralizing antibodies // Infect. Immun. 1991. V. 59. P. 2978–2983.
Singh M., Kazzaz J., Ugozzoli M., Malyala P., Chesko J., O’Hagan D.T. Polylactide-co-glycolide microparticles with surface adsorbed antigens as vaccine delivery systems // Curr. Drug. Deliv. 2006. V. 3. P. 115–120.
Falo Jr. L.D., Kovacsovics-Bankowski M., Thompson K., Rock K.L. Targeting antigen into the phagocytic pathway in vivo induces protective tumour immunity // Nat. Med. 1995. V. 1. P. 649–653.
Fifis T., Gamvrellis A., Crimeen-Irwin B., Pietersz G.A., Li J., Mottram P.L. et al. Size-dependent immunogenicity: therapeutic and protective properties of nano-vaccines against tumors // J. Immunol. 2004. V. 173. P. 3148–3154.
Scheerlinck J.P., Gloster S., Gamvrellis A., Mottram P.L., Plebanski M. Systemic immune responses in sheep, induced by a novel nano-bead adjuvant // Vaccine. 2006. V. 24. P. 1124–1131.
Heufler C., Koch F., Schuler G.. Granulocyte/macrophage colonystimulating factor and interleukin 1 mediate the maturation of murine epidermal Langerhans cells into potent immunostimulatory dendritic cells // J. Exp. Med. 1988. V. 167. P. 700–705.
Lynch J.M., Briles D.E., Metzger D.W. Increased protection against pneumococcal disease by mucosal administration of conjugate vaccine plus interleukin-12 // Infect. Immun. 2003. V. 71. P. 4780–4788.
Bradney C.P., Sempowski G.D., Liao H.X., Haynes B.F., Staats H.F. Cytokines as adjuvants for the induction of anti-human immunodeficiency virus peptide immunoglobulin G (IgG) and IgA antibodies in serum and mucosal secretions after nasal immunization // J. Virol. 2002. V. 76. P. 517–524.
Загрузки
Опубликован
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2025 Izdenister natigeler
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.
