ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA

Авторы

  • Ельвира Шаденова РГП "Институт генетики и физиологии" КН МНиВО РК https://orcid.org/0000-0002-7844-4264
  • Мариям Кайгермазова РГП "Институт генетики и физиологии" КН МОН РК
  • Медет Сембеков РГП "Институт генетики и физиологии" КН МОН РК
  • Умит Ошакбай РГП "Институт генетики и физиологии" КН МОН РК
  • Эрика Джангалина РГП "Институт генетики и физиологии" КН МОН РК

DOI:

https://doi.org/10.37884/2-2023/33

Ключевые слова:

микроклональное размножение, каллус, каллусогенез, эксплант, in vitro, грецкий орех, культура ткани

Биография автора

Ельвира Шаденова, РГП "Институт генетики и физиологии" КН МНиВО РК

Шаденова Ельвира Абылгазиевна - кандидат с.-х. наук, заведующий лабораторией генетики и репродукции лесных культур института генетики и физиологии, Республика Казахстан, 050060, г. Алматы, пр.аль-Фараби,93,  e-mail: shadel08@mail.ru

 

 

Аннотация

Источниками фитопрепаратов являются лекарственные растения, которые ценятся во всем мире, и которые могут исчезнуть в эпоху изменения климата. Одним из таких источников является грецкий орех. Грецкий орех входит в род Juglans семейства Juglandaceae. Цель исследования состоит, в том, чтобы изучить действие различных концентрации стимуляторов роста на различные виды эксплант Juglans regia effigia с использованием технологии микроклонального размножения, где в качестве материнского растения брали взрослые деревья. Данное исследование рассчитана на получение дополнительного лекарственного источника сырья в виде каллусных или суспензионных культур. Наилучшие результаты были достигнуты при инициации эксплантов на культуральной среде DKW с использованием 1 и 10 мг/л БАП, ТDZ 5 и 10 мг/л. По истечению 20 дней среднее количество образованных побегов составляло 2-5штук на один каллус, высота побега 1,6-2,7 см.  

Библиографические ссылки

Буркова Е.А., Канарский А.В., Канарская З.А. (2014). Перспектива применения фитобиотехнологии для получения биологически активных веществ //Вестник Казанского технологического университета, 2014. -Т.14. – С.352–356;

Mulabagal V., Tsay H-S. Plant cell cultures -an alternative and efficient source for the production of biologically important secondary metabolites //Int.Journal Applied Science Engineering, 2004. – V.2. - №1. – Р.29-48.

Trandafir I., Cosmulescu S., Botu M., Nour V. Antioxidant activity, and phenolic and mineral contents of the walnut kernel (Juglans regia L.) as a function of the pellicle color //Fruits, 2016. -V. 71. – Р.173–184. doi:10.1051/fruits/2016006.115

Hojatollah Kavosi Ali Khadivi. The selection of superior late-leafing genotypes of Persian walnut (Juglans regia L.) among seedling originated trees based on pomological characterizations //Scientia Horticulturae, 2021. - V.28. -P. 110-299. DOI: 10.1016/j.scienta.2021.110299.

Olimpia A. Iordănescu, Isidora Radulov, Ioana P. Buhan et al. Physical, Nutritional and Functional Properties of Walnuts Genotypes (Juglans regia L.) from Romania //Agronomy, 2021. -V.11. -P.1092. https://doi.org/10.3390/agronomy11061092.

Змушко А.А., Рундя А.П. Размножение грецкого ореха (juglans regia l.) in vitro //Плодоводство, 2015. - Т. 27. – С.404-410.

Ricardo Julian Licea-Moreno, Alexandru Fira, Georgi Chocov. Micropropagation of valuable walnut genotypes for timber production: new advances and insights //Annals of Silvicultural Research, 2020. 44 (1). -P.5-13. DOI: http://dx.doi.org/10.12899/asr-1932.

Кушнаренко С.В., Ромаданова Н.В., Турдиев Т.Т., Аралбаева М.М., Қалыбаев Қ.Р. Сохранение в криобанке образцов грецкого ореха из нескольких популяций сайрам-угамского государственного национального природного парка //Вестник КазНУ. Серия экологическая. -№2. -Т.71. - С.72-80. https://doi.org/10.26577/EJE.2022.v71.i2.07.

Kepeneka, K. and Kolağasib, Z. 2016. Micropropagation of walnut (Juglans regia L.). Acta Physica Polonica, Vol. 130, No. 1, 150 – 156.

López, J.M. Field behavior of self-rooted walnut trees of different cultivars produced by tissue culture and planted in Murcia (Spain) //Acta Hort., 2001.- 544. -P. 543–546.

Manjkhola, S., U. Dhar, and M. Joshi. Organogenesis, embryogenesis and synthetic seed production in Arnebia euchroma an critically endangered medicinal plant of the Himalaya //In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant, 2005. -V.41. – P.244-248.

Bandyopadhyay S., Cane K., Rasmussen G., and Hamill J. Efficient plant regeneration from seedling explants of two commercially important temperate eucalypt species–Eucalyptus nitens and E. Globulus //Plant Sci., 2005. – 140. – P.189-198.

Xiao-Dong CAI, Gui-Yuan WANG, Wen-Juan CAO. In vitro Induction and Proliferation of Callus from Immature Cotyledons and Embryos of Juglans regia cv. ‘Xiangling’ //NotBotHorti Agrobo, 2013. - 41(2). -P.378-384.

Fatima, A., Kamili A.N., and Shah A.M. Plantlet regeneration from excised embryonal axes, shoot apices and nodal segments of Juglans regia L. //Acta Hort., 2006 (ISHS)-705. -P.387-392.

Hasey et al., Hasey, J.K., Westerdahl, B.B., Micke, W.C., Ramos, D.E. &Yeater, J.T. Yield performance of own-rooted “Chandler” walnut versus “Chandler” walnut on Paradox Rootstock //Acta Hort., 2001. -P. 489–493.

Fernández H., Pérez C., and Sánchez-Tamés R. Modulation of the morphogenic potential of the embryonic axis of Juglans regia by cultural conditions //Plant Growth Regul.,2000. -V. 30. -P.125-131.

Vahdati K., Jariteh M., Niknam V., Mirmasoumi M., and Ebrahimzadeh H. Somatic embryogenesis and embryo maturation in Persian walnut //Acta Hort., 2006.- 705. -P.199-205.

Загрузки

Опубликован

29.06.2023

Как цитировать

Шаденова, Е., Кайгермазова , М. ., Сембеков, М. ., Ошакбай, . У. ., & Джангалина , Э. . (2023). ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA. Izdenister Natigeler, (2 (98), 336–344. https://doi.org/10.37884/2-2023/33

Выпуск

Раздел

ВОДНЫЕ, ЗЕМЕЛЬНЫЕ И ЛЕСНЫЕ РЕСУРСЫ

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)