ДОЗОЗАВИСИМАЯ СМЕРТНОСТЬ ПАУТИННОГО КЛЕЩА TETRANYCHUS TURKESTANI ПРИ ОБРАБОТКЕ РАЗЛИЧНЫМИ ДЕЙСТВУЮЩИМИ ВЕЩЕСТВАМИ АКАРИЦИДОВ
Авторы
-
Нургул Шисенбаева
ТОО «Казахский научно-исследовательский институт защиты и карантина растений им. Ж. Жиембаева», Алматы, Казахстан
https://orcid.org/0009-0005-8930-4274
-
Айнура Әділханқызы
Казахский национальный аграрный исследовательский университет, Алматы, 050010, Республика Казахстан;
https://orcid.org/0000-0001-8048-7987
-
Гүлбарам Берден
ТОО «Казахский научно-исследовательский институт защиты и карантина растений им. Ж. Жиембаева», Алматы, Казахстан
https://orcid.org/0009-0002-9101-9147
-
Асылан Касымов
ТОО «Казахский научно-исследовательский институт защиты и карантина растений им. Ж. Жиембаева», Алматы, Казахстан
https://orcid.org/0009-0007-8192-2603
-
Нуржан Ташигул
Университета Памуккале, г. Денизли, Турция
https://orcid.org/0009-0002-3109-3708
https://doi.org/10.37884/3-2026/10
Ключевые слова:
Tetranychus turkestani, соя, численность, борьба, дозозависимость, действующее вещество, концентрация.Аннотация
В работе представлены результаты лабораторных исследований по оценке токсичности ряда инсектицидных и акарицидных препаратов в отношении паутинного клеща Tetranychus turkestani, поражающего соевые растения в условиях защищённого и открытого грунта. Для каждого препарата были построены дозозависимые кривые смертности, отражающие характер реакции популяции на изменение концентрации действующего вещества, и рассчитаны основные токсикологические параметры — LC₅₀ и LC₉₀. Это позволило провести объективное сравнительное ранжирование препаратов по уровню эффективности и определить диапазоны концентраций, обеспечивающих надёжный контроль вредителя. Установлено, что биологическая активность исследованных действующих веществ существенно различалась. Лямбда-цигалотрин проявил умеренную эффективность и обеспечивал выраженный летальный эффект только при относительно высоких концентрациях (LC₅₀ = 33,3 мг/л; LC₉₀ = 66,7 мг/л), что указывает на ограниченную чувствительность T. turkestani к данному соединению. В то же время препараты на основе авермектинов, а также комбинированное действующее вещество абамектин + спиромезифен характеризовались высокой токсичностью и обеспечивали значительный уровень смертности уже при низких концентрациях (LC₅₀ = 0,18 мг/л и 0,34–6,9 мг/л соответственно). Пропаргит отличался пороговым типом действия (LC₅₀ = 28,5 мг/л), что отражает специфику его контактной токсикодинамики. Полученные результаты позволяют не только сопоставить эффективность различных соединений, но и выявить особенности их действия, имеющие значение для практики. Это подчёркивает, что выбор препарата должен основываться на учёте дозозависимого эффекта, механизма действия и потенциальной устойчивости популяций вредителя.
Библиографические ссылки
Adesanya, A.W., Lavine, M.D., Moural, T.W., Lavine, L.C., Zhu, F., & Walsh, D.B. (2021). Mechanisms and management of acaricide resistance for Tetranychus urticae in agroecosystems // Journal of Pest Science, 94(3), 639–663. https://doi.org/10.1007/s10340-021-01342
Assouguem, A., Kara, M., Mechchate, H., Bulak, Y., Benmessaoud, S., Ramzi, A., & Abdullah, K.R. (2022). Current situation of Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae) in Northern Africa: Sustainable control methods and priorities for future research. Sustainability, 14(4), 2395. https://doi.org/10.3390/su14042395
Chen, L., et al. (2025). Population genomics reveal multiple independent origins of pesticide resistance in the polyphagous pest Tetranychus urticae. Communications Biology, 8, 1197. https://doi.org/10.1038/s42003-025-08658-9
Chen, J.C., Ma, Z.Z., Gong, Y.J., Cao, L.J., Wang, J.X., Guo, S.K., ... & Wei, S.J. (2022). Toxicity and control efficacy of an organosilicone to the two-spotted spider mite Tetranychus urticae and its crop hosts. Insects, 13(4). 341. https://doi.org/10.3390/insects13040341
Mukhamadiev, N.S., Chadinova, A.M., Mendibaeva, G.Zh., Kurmangalieva, N.D., & Taishikov, M.A. (2025). Biological protection of soybean from Tetranychus turkestani under conditions of the Almaty region // Research, Results, 2(106), 253–263. [In Russ] https://doi.org/10.37884/2-2025/25
Uygun, T., Metin, M., & Durdane, O. (2020). A new approach to monitor and assess the damage caused by two-spotted spider mite. Experimental and Applied Acarology, 80(3), 335–346.
Inak, E., Demirci, B., Vandenhole, M., Söylemezoğlu, G., Van Leeuwen, T., & Toprak, U. (2023). Molecular mechanisms of resistance to spirodiclofen and spiromesifen in Tetranychus urticae. Crop Protection. 172. 106343. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2023.106343
İnak, E., Çobanoğlu, S., & Ferizli, A. G. (2022). Monitoring of acaricide resistance and target site mutations in Tetranychus urticae populations collected from bean fields in Central Anatolia // Experimental and Applied Acarology. https://doi.org/10.1080/01647954.2022.2062048
Rabbi, A., Uddin, M.N., Alim, M.A., Al Bachchu, M.A., Bhuyain, M.M.H., & Akter, S. (2022). Efficacy of some pesticides against Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae) and their residual effects on Coccinella septempunctata (L.)(Coleoptera: Coccinellidae) // International Journal of Tropical Insect Science, 42(1), 615-626. https://doi.org/10.1007/s42690-021-00581-w
Padilha, G., Alex, R., Filho, A.C., Pozebon, H., & Rogers, J. (2020). Damage assessment and economic injury level of the two-spotted spider mite Tetranychus urticae in soybean // Pesquisa Agropecuária Brasileira, 55, e01836. https://doi.org/10.1590/S1678-3921.pab2020.v55.01836
Piepho, H.-P., Malik, W. A., Bischoff, R., El-Hasan, A., Scheer, C., Sedlmeier, J. E., Gerhards, R., Petschenka, G., & Voegele, R. T. (2024). Efficacy assessment in crop protection: A tutorial on the use of Abbott’s formula // Journal of Plant Diseases and Protection, 131, 2139–2160.
Shumate, S., Haylett, M., Nelson, B., Young, N., Lamour, K., Walsh, D., Bradford, B., & Clements, J. (2023). Using targeted sequencing and TaqMan approaches to detect acaricide (bifenthrin, bifenazate, and etoxazole) resistance associated SNPs in Tetranychus urticae collected from peppermint fields and hop yards. PLOS ONE, 18(3), e0283211. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0283211
Sato, M.E., Silva, M.Z., Raga, A., & Souza Filho, M.F. (2005). Abamectin resistance in Tetranychus urticae: Selection, stability and crossresistance to acaricides // Neotropical Entomology. 34(6). 991–998. https://doi.org/10.1590/S1519-566X2005000600014
Stumpf, N. & Nauen, R. (2002). Cross-resistance, inheritance, and biochemistry of mitochondrial electron transport inhibitor-acaricide resistance in Tetranychus urticae // Journal of Economic Entomology. 95(5). 693–700. https://doi.org/10.1603/0022-0493-95.5.693
Van Leeuwen, T., Vontas, J., Tsagkarakou, A., Dermauw, W., & Tirry, L. (2010). Acaricide resistance mechanisms in Tetranychus urticae. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 40(8). 563–572. https://doi.org/10.1016/j.ibmb.2010.05.008
Загрузки
Просмотров аннотации: 9 | Загрузок PDF: 1Опубликован
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2026 Izdenister natigeler
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.
